不育症在临床上的发生率约为10%,其中单纯与男性相关的因素约为30%,无精、少精、弱精及精子畸形等是导致男性不育的主要原因,且精子质量逐年下降已经成为一个世界范围性的问题。

既往研究实验表明SLC22A14与男性的生育功能密切相关,然而其相关的生理机制却并未得到很好的研究。近日,清华大学药学院陈立功团队发现SLC22A14是一种核黄素转运蛋白,通过影响核黄素酶活性调控精子能量代谢,相关研究成果发表在Cell Reports上。

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主要研究成果
01
Slc22a14敲除后雄性小鼠出现不育现象
研究首先通过敲除Slc22a14构建雄性小鼠不育模型,用于探究SLC22A14蛋白的生理功能。结果显示Slc22a14敲除后,小鼠不能使雌性小鼠怀孕(图1C),其精子鞭毛发生卷曲且呈现发卡结构(图D&F)。在体外试验中,Slc22a14敲除后的精子不能有效穿透卵细胞(图1F&G),进一步探究精子的顶体形成功能及精子移动能力(使精子有效穿透卵细胞的两个关键能力),发现Slc22a14敲除后精子顶体功能正常(图1J)而移动能力显著受损(图1K)。这些结果表明Slc22a14缺失后小鼠精子鞭毛发生卷曲,移动能力受损,导致雄性小鼠出现不育现象。
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图1 Slc22a14敲除后小鼠表现出不育现象
02
代谢组学探究Slc22a14敲除小鼠精子的能量代谢改变机制
2.1 非靶向代谢组学

研究结果显示Slc22a14敲除后,小鼠精子存活率并没有发生显著改变(图2A),而其ATP含量显著下降(图2B),活性氧产生增加(图2C),虽然其线粒体势能降低,但其线粒体形态并未发生变化,这表明SLC22A14可能作用于精子能量代谢。对精子进行非靶向代谢组学分析,差异代谢物pathway分析显示Slc22a14敲除后精子糖酵解途径表达上调(图2E)而TCA循环显著下调(图2F)。研究进一步通过13C示踪实验对Slc22a14敲除后,精子糖酵解及TCA过程中的代谢产物变化进行了探究,证明Slc22a14敲除后精子的能量代谢发生改变,产能方式从氧化磷酸化途径(OXPHOS)转至糖酵解途径。

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图2 Slc22a14敲除后小鼠精子的能量代谢途径发生改变
2.2 脂质组学

非靶向代谢组学结果显示Slc22a14敲除后,精子脂肪酸β氧化(FAO)受到抑制(图2F),酰基肉碱的含量发生改变(图3A&B),且在SLC22A14过表达的细胞中酰基肉碱的含量显著上升(图3C),这表明脂肪酸代谢可能与SLC22A14的功能相关。进一步脂质组学分析显示Slc22a14敲除后,精子游离脂肪酸(FFA)和甘油三酯(TAG)的含量都显著上调(图3D&E)。

体外培养试验显示加入etomoxir(肉碱棕榈酰转移酶I,CPT1)及2-DG(己糖激酶抑制剂)后,精子ATP产量显著降低(图3F),显示FAO与糖酵解过程共同作用于ATP产生。14C标记试验显示Slc22a14敲除后,FAO的终产物14CO2含量降低(图3G),而14CO2在SLC22A14过表达细胞中显著增多(图3H)。OCR测试表明由etomoxir导致的OCR降低在野生型小鼠中更为显著一些(图3I&J)。这些结果说明Slc22a14敲除导致的ATP减少与FAO的阻滞有关。

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图3 Slc22a14敲除后小鼠精子的脂质代谢改变
03
SLC22A14功能探究
免疫荧光实验与精子不同部位的蛋白组学实验显示,SLC22A14位于精子的线粒体内膜(IMM)上。进一步线粒体的非靶向代谢组学实验结果显示,4个核黄素相关代谢物在SLC22A14过表达细胞株中显著增多(图4A),而核黄素在Slc22a14敲除细胞中显著减少(图4B)。同位素摄入实验表明SLC22A14过表达后,核黄素含量增多(图4C),3D模型及同位素实验显示SLC22A14是一种具有高通量但低亲和力的核黄素转运蛋白(图4D-F)。

Slc22a14敲除后,精子中FAO相关的黄素酶活性降低,而通过核黄素缺乏的饮食喂养小鼠,发现该饮食结构下小鼠精子表现出与Slc22a14敲除小鼠一致的表型,结合qPCR实验验证SLC22A14通过影响核黄素转运调控精子能量代谢。

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图4 SLC22A14是一种核黄素转运蛋白
小结
本研究结合现代化的组学工具与传统的分子生物学实验,对影响雄性生育功能的关键蛋白——SLC22A14的功能及其作用机制进行了深入研究,发现SLC22A14是位于精子线粒体内膜的核黄素转运蛋白,其功能失调会干扰核黄素向线粒体中转运,抑制黄素酶的数量和活性,从而影响到精子FAO及线粒体的氧化磷酸化过程,导致ATP减少最终引起雄性不育。